Способ закрытия раневой полости после резекции копчика в эксперименте

Хидиятов И.И. 1, Герасимов М.В. 2, Кудояров Р.Р.1, Закиржанова А.Р.2

1 ГБОУ ВПО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России, кафедра топографической анатомии и оперативной хирургии; 2 ГБУЗ РБ Городская больница № 21, г. Уфа

Одной из нерешенных проблем после резекции копчика по поводу посттравматической кокцигодинии является закрытие раневой полости. В эксперименте была проведена резекция копчика у 6 поросят (3 - основная группа, 3-группа сравнения). В основной группе после резекции копчика была проведена пересадка измельченнойкостной массы, изготовленной из собственного копчика. В группе сравнения края раны подшивались к ее дну. Результаты морфологических исследований показали преимущество пересадки измельченной аутокости.

Ключевые слова: посттравматическая кокцигодиния, эксперимент, резекция копчика

Актуальность

Более чем в 80% случаев причиной развития кокцигодинии является травма копчика [2, 3]. При неэффективности консервативного лечения кокцигодинии ставится вопрос о хирургическом лечении, заключающемся в резекции копчика [1, 4, 6]. После резекции копчика остается достаточно большая раневая полость, которую многие хирурги закрывают местными тканями, т.е. проводится подшивание ко дну раны тканей, лежащих рядом с раной: мышц, фасций, клетчатки. Такой способ закрытия вызывает сильное натяжение сшиваемых тканей, что может неблагоприятно сказаться на заживлении и привести к расхождению краев раны. Подшивание краев раны ко дну может привести к травмированию копчикового сплетения, что приводит к развитию в послеоперационном периоде болей. Так, по данным К.Н. Баландина, у 18,4% прооперированных больных развиваются боли в области удаленного копчика. Ряд пациентов может жаловаться на ощущение сидения на «кости» [5]. Для закрытия раневой полости известно применение биоматериала для объемной пластики «Аллоплант». Однако использование биоматериала требует определенных финансовых затрат.

Цель исследования: оценить в эксперименте эффективность применения собственной измельченной костной массы из копчика для закрытия послеоперационной раны.

Материалы и методы исследования

В условиях вивария Башкирского государственного медицинского университета на 6-и поросятах весом 10-12 кг были проведены экспериментальные операции по аутотрансплантации резецированного копчика. В основной и в группе сравнения, – было по 3 поросенка. Операции на животных проводились согласно приказу № 701 от 17.07.1978 г. «О внесении дополнений в приказ МЗ СССР №755 от 12.08.1977 г», положения Хельсинской декларации по вопросам медицинской этики и международным медико-биологическим исследованиям с использованием животных (1989). Всем животным после их фиксации проводилось сочетанное обезболивание с использованием внутримышечно препарата «ромитар» в дозе 0,3мг на кг веса и местная анестезия с использованием 1% раствора Solnovacaini. Во время операции проводилась ампутация хвоста и резекция копчикового позвонка, прилежащего к первому позвонку хвоста. После резекции позвонка образовывалась раневая полость 4х2,5 см, глубиной 2 см. Резецированный позвонок измельчали до мелкодисперсной массы при помощи электрической мясорубки. По периметру рану обкладывали гемостатической губкой и заполняли костной массой. Рану закрывали 2-мя рядами швов: первый ряд швов накладывался между мышцами и фасциямиповерх костной массы с использованием шовной нити «викрил» 4/0, второй ряд швов накладывался на кожу с использованием  шелка. В группе сравнения раневую полость закрывали путем подшивания краев мышц и фасций ко дну раны «викрилом», на кожу накладывались швы из шелка. При этом было отмечено значительное натяжение между сшиваемыми тканями, наблюдалось частичное прорезывание швов. В послеоперационном периоде ежедневно дважды проводилась обработка раны с использованием раствора «диоксидина» 1% и накладывалась повязка с мазью «левомиколь». После выведения животных из опыта на 30 -32 сутки проводились гистологические исследования макропрепаратов, взятых из зоны оперативного вмешательства. Окраску материала проводили гематоксилин-эозином.

Результаты и обсуждение

Ежедневные наблюдения, перевязки, показали, что в основной группе у всех животных раны заживали по типу первичного натяжения. В области пересадки дефекта кожи не отмечалось. В группе сравнения у двух животных (из 3-х) наблюдалось частичное расхождение краев раны в результате прорезывания швов. У этих животных заживление ран происходило по типу вторичного натяжения, что потребовало дополнительного лечения. После заживления раны у всех животных группы сравнения в области удаленного копчика наблюдался кожный дефект в виде линейного углубления кожи размером 3,5 х 2 см. Исследование макропрепаратов, полученных после иссечения тканей в области операции, показало, что в зоне пересадки аутокости наблюдается консолидированный костный конгломерат 3,5 х 2 х 2 см3,заполняющий полностью полость раны. При этом визуально признаки воспаления не обнаруживались. У животных, которым проводилось подшивание краев раны ко дну,в зоне удаленного копчика наблюдалась выраженная рубцовая ткань.

При гистологических исследованиях препаратов было обнаружено, что у животных основной группы в мышечном слое отмечается стойкое полнокровие сосудов мелкого среднего калибра. В серии гистологических срезов имеются участки, представленные зрелой костной тканью, которая отграничена от мышечной ткани зрелой соединительнотканной капсулой. Данный участок инкапсуляции костной ткани располагается в месте бывшего дефекта. Отмечается наличие скудной, очаговой лейкоцитарной инфильтрации вокруг участков инкапсуляции. Местами костная ткань полностью организуется, замещая дефект зрелой соединительной тканью.

У животных группы сравнения, которым проводилось подшивание краев раны ко дну,в месте дефекта отмечается стойкое полнокровие расширенных сосудов, местами присутствуют перивазальные лейкоцитарные инфильтраты. Отмечается отек мышечных слоев, из которых был сформирован валик в месте дефекта. Мышцы и фасции, из которых был сформирован валикдля закрытия дефекта, отграничиваются от окружающих тканей неравномерно развивающейся соединительнотканной капсулой. Вокруг отмечается выраженная воспалительная инфильтрация, представленная лейкоцитарным рядом. Также в зоне дефекта имеются обширные зоны геморрагического пропитывания всех слоев. В большей степени геморрагическому пропитыванию подвержены ткани, которыми закрывался дефект. Там же наблюдаются участки некротических изменений, окруженные зоной демаркационного воспаления, а также участки аутолиза.

Заключение

Таким образом, в эксперименте было установлено, что пересадка измельченной аутокости (копчика) способствует сохранению формы в области удаленного копчика и более благоприятному заживлению полости раны.

Литература

  1. Бабкин А.В., Егорова  Кокцигодиния: клиника, диагностика, лечение // ArsMedica. 2011. № 17 (53). С. 36-46.
  2. Баркан М.Б. О кокцигодинии // Клиническая медицина. 1980. Т.58, №6. С. 96-101.
  3. Беленький  А.Г. Кокцигодиния //Русский медицинский журнал. 2004.Т.12,№ 6. С. 396-398.
  4. Федоров В.Д., Дульцев Ю.В. Проктология. Москва, 1984.- 383 с.
  5. Хидиятов И.И., Куляпин А.В., Герасимов М.В., Кудояров Р.Р. Хирургическое лечение больных с посттравматической кокцигодинией //Медицинский Вестник Башкортостана, 2015.-№.4.-С.91-95
  6. Chronic coccydynia in adolescents. A series of 53 patients / Maigne J., Pigeaul I., Aguer N., Doursourian L. // European journal of Physical and Rehabilitation Medicine. 2011. Vol. 47. № 2. P. 245-252.

Сведения об авторах

  1. Хидиятов Ильдар Ишмурзович. – профессор, заведующий кафедрой топографической анатомии и оперативной хирургии ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России, 450000 Уфа, Ленина 3.
  2. Герасимов Максим Владимирович – врач-ординатор отделения колопроктологии ГКБ № 21, ул. Лесной проезд 3.
  3. Кудояров Рустем Равилович – ассистент кафедры патологической анатомии ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России, 450000 Уфа, Лесной проезд 3. E-mail: xirurg 19@ yandex.ru
  4. Закиржанова Алиса Радиковна – хирург-интерн ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России, 45000, Уфа,Ленина 3

Метки и направления этого материала: